发明名称 麒麟尾种苗组培快繁方法
摘要 本发明公开了一种麒麟尾种苗组培快繁方法,其通过外植体选择培育,无菌材料获得,无菌材料的驯化与继代扩繁,及壮苗生根培养四五个步骤实现。本发明在4-10月份,当母株抽出3-5个节,且新萌发的顶芽长度约10-40mm时,采集母株新萌发的10-20mm的顶芽或侧芽作为外植体,并对诱导、扩繁、壮苗、生根的培养基进行优化改良,继代团块切割时对芽粗度大于2.5mm的粗芽按2-4芽/团进行切割,芽粗度小于或等于2.5mm的细小芽则以8-10mm的团块直径进行切割,并对组培苗各阶段的培养条件进行了优化,保证其培养能够稳定生长。通过本发明方法,在短期内即可获得大量优质苗木。
申请公布号 CN103704141B 申请公布日期 2016.03.30
申请号 CN201310754735.9 申请日期 2013.12.31
申请人 泉州市泉美生物科技有限公司 发明人 叶清梅;李雪;黄雨花;黄惠玲;简丽观;钟春德;涂艺辉;杨双霞
分类号 A01H4/00(2006.01)I 主分类号 A01H4/00(2006.01)I
代理机构 泉州市文华专利代理有限公司 35205 代理人 车世伟
主权项 麒麟尾种苗组培快繁方法,其特征在于:通过以下步骤实现:一、外植体选择培育按常规管理母株,在4‑10月份,当母株抽出3‑5个节,且新萌发的顶芽长度10‑40mm时,采集母株新萌发的顶芽或侧芽作为外植体,采集的外植体长度10‑20mm;二、无菌材料获得:将采集好的外植体清洁漂洗后,切去截面变色部分,接种于培养基中进行第一代无菌材料的培养;此培养基采用MS改良培养基,并添加有柠檬酸80‑100mg·L<sup>‑1</sup>,6‑苄基腺嘌呤(6‑BA)1.0‑5.0mg·L<sup>‑1</sup>,糠基腺嘌呤(KT)1.0‑4.0mg·L<sup>‑1</sup>,a‑萘乙酸(NAA)0.1‑0.5mg·L<sup>‑1</sup>,蔗糖30‑40g·L<sup>‑1</sup>和卡拉胶4.5‑6.5g·L<sup>‑1</sup>,调整pH值为5.6‑6.0,后进行灭菌;培养条件:温度26±1℃,光照12±2H/D,光强3.75‑6.25μmol·m<sup>‑2</sup>·s<sup>‑1</sup>,湿度40‑70%,培养周期4‑5周;三、无菌材料的驯化与继代扩繁:(一)无菌材料的驯化第一代无菌材料培养后当新芽抽出长度大于20mm时,去顶留8‑10mm,如侧芽分化时,以2‑4芽/团进行方向性切割,将切割好的芽团接种于培养基中进行驯化培养,此培养基采用MS改良培养基,并添加有柠檬酸80‑100mg·L<sup>‑1</sup>、6‑BA1.0‑3.0mg·L<sup>‑1</sup>、KT2.0‑4.0mg·L<sup>‑1</sup>、NAA0.1‑0.5mg·L<sup>‑1</sup>、蔗糖30‑40g·L<sup>‑1</sup>和卡拉胶4.5‑6.5g·L<sup>‑1</sup>,调整pH值为5.6‑6.0,后进行灭菌;培养条件:温度26±1℃,光照12±2H/D,光强18.75‑22.5μmol·m<sup>‑2</sup>·s<sup>‑1</sup>,湿度40‑70%,培养周期4‑6周;按上述方式进行4‑5次驯化培养后即完成驯化,进入扩繁阶段;(二)无菌材料的继代扩繁进入扩繁阶段的材料每个芽团有12‑20个芽,对芽粗度大于2.5mm 的粗芽按2‑4芽/团进行切割,并采用对剖方式破坏其生长点,若新芽抽出长度大于20mm,去顶留8‑10mm;对芽粗度小于或等于2.5mm的细小芽则以8‑10mm的团块直径进行切割,将切割好的芽团接种于MS改良培养基中进行扩繁培养,并在MS改良培养基中添加柠檬酸80‑100mg·L<sup>‑1</sup>,6‑BA0.1‑3.0mg·L<sup>‑1</sup>、KT2.0‑4.0mg·L<sup>‑1</sup>、NAA0.1‑0.5mg·L<sup>‑1</sup>、蔗糖30‑40g·L<sup>‑1</sup>和卡拉胶4.5‑6.5g·L<sup>‑1</sup>,调整pH值为5.6‑6.0,后进行灭菌;培养条件:温度26±1℃,光照12±2H/D,光强18.75‑22.5μmol·m<sup>‑2</sup>·s<sup>‑1</sup>,湿度40‑70%,培养周期5‑6周;四、壮苗生根培养:(一)壮苗培养将经扩繁培养后的芽团按2‑4芽/团方向性切割后,将切下的团块接种到壮苗培养基中,壮苗培养基采用MS改良培养基,并添加柠檬酸80‑100mg·L<sup>‑1</sup>,KT0.5‑1.0mg·L<sup>‑1</sup>、NAA0.1‑0.3mg·L<sup>‑1</sup>、蔗糖30‑40g·L<sup>‑1</sup>和卡拉胶4.5‑6.5g·L<sup>‑1</sup>,调整pH值为5.6‑6.0,后进行灭菌;培养条件:温度26±1℃,光照14±2H/D,光强18.75‑22.5μmol·m<sup>‑2</sup>·s<sup>‑1</sup>,湿度40‑70%,培养周期5‑6周;(二)生根培养当团块上的芽长度达15‑20mm、具有两片完整叶且叶片平展时,按单芽进行切割,切下来的单芽接种到生根培养基中进行生根培养,生根培养基采用MS改良培养基,并添加柠檬酸80mg·L<sup>‑1</sup>,吲哚丁酸(IBA)1‑3mg·L<sup>‑1</sup>、NAA0.2‑0.5mg·L<sup>‑1</sup>、活性炭100‑300mg·L<sup>‑1</sup>、蔗糖40g·L<sup>‑1</sup>和卡拉胶4.5‑6.5g·L<sup>‑1</sup>,调整pH值为5.6‑6.0,后进行灭菌;培养条件:温度26±1℃,光照时间14±2H/D,光强25‑31.25μmol·m<sup>‑2</sup>·s<sup>‑1</sup>,湿度40‑70%;生根培养14D后开始长根,6‑8周后长根率达95%,根数3‑6条,植株高度达30‑65mm,具有3片完整叶,长势健壮;上述各步骤中的MS改良培养基是指在常规的MS培养基中添加220 mg·L<sup>‑1</sup>Ca(NO<sub>3</sub>)<sub>2</sub>·4H<sub>2</sub>O,且KNO<sub>3</sub>用量由1900mg·L<sup>‑1</sup>增加到2100mg·L<sup>‑1</sup>。
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