发明名称 带有标签的肠道病毒71型全长感染性克隆的制备方法及应用
摘要 本发明公开了一种带有标签的肠道病毒71型全长感染性克隆的制备方法及应用,其步骤是:(1)总RNA的提取;(2)EV71的RT-PCR扩增;(3)EV71亚克隆的构建;(4)含有EV71基因的重组克隆的构建;(5)带有eGFP和DsRed的EV71全长感染性克隆的构建。通过细胞病变、荧光检测、基因检测、病毒蚀斑和药物抑制等实验证明成功获得带有标签的EV71全长感染性克隆。本发明在动物模型、病毒复制与致病机理、药物筛选和药物作用机制、疫苗和诊断试剂的研发等方面具有广泛的应用价值。
申请公布号 CN102517317B 申请公布日期 2014.03.26
申请号 CN201110444377.2 申请日期 2011.12.23
申请人 中国科学院武汉病毒研究所 发明人 张波;史佩勇;许文波;袁志明;邓成林;商宝娣;贾凡
分类号 C12N15/66(2006.01)I;C12N15/41(2006.01)I;C12N15/63(2006.01)I;C12N7/01(2006.01)I;C12Q1/70(2006.01)I;C12Q1/02(2006.01)I 主分类号 C12N15/66(2006.01)I
代理机构 武汉宇晨专利事务所 42001 代理人 王敏锋
主权项 一种带有绿色荧光蛋白或红色荧光蛋白标签的EV71型全长感染性质粒构建方法,其步骤是:(1)总RNA的提取:取140μl的EV71病毒液,按照QIAamp Viral RNA试剂盒说明书的要求抽提EV71的RNA;(2)EV71的RT‑PCR扩增:根据EV71基因的特性,将该基因分为了四个部分,分别命名为F1、F2、F3和F4,以步骤(1)中的总RNA为模版,采用RT‑PCR分别获得DNA片段F1、F2、F3和F4,片段的序列为SEQ ID NO:1、SEQ ID NO:2、SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:4所示,DNA片段F1的引物:SEQ ID NO:5和SEQ ID NO:6,DNA片段F2的引物:SEQ ID NO:7和SEQ ID NO:8,DNA片段F3的引物:SEQ ID NO:9和SEQ ID NO:10,DNA片段F4的引物:SEQ ID NO:11和SEQ ID NO:12,另外SEQ ID NO:5含有T7RNA聚合酶启动子序列SEQ ID NO:13;RT‑PCR的反应体系均为:PrimeScript1Step Enzyme Mix:2μl,2×1Step Buffer:25μl,引物:1μl,引物:1μl,模板RNA为:3μl,无RNase水:18μl;扩增条件为:50℃30min,94℃2min,94℃30s,55℃30s,72℃3min,72℃10min,16℃10min,28个循环;(3)EV71亚克隆的构建:将步骤(2)中获得的片段F1、F2、F3、F4分别和载体pUC19连接,并将连接产物转化感受态HB101,PCR鉴定为阳性的克隆进行培养并抽提质粒进行测序,测序正确的质粒命名为pUC19‑F1、pUC19‑F2、pUC19‑F3和pUC19‑F4;(4)含有EV71基因的重组质粒的构建:用BsiwI和HindIII酶切步骤(3)中获得的pUC19‑F1和pUC19‑F2,回收pUC19‑F1的大片段和pUC19‑F2的小片段,使用浓度为1%w/v琼脂糖凝胶电泳检测DNA的质量,然后使用T4DNA连接酶连接经过回收的DNA,并将连接产物转化感受态HB101,将PCR鉴定为阳性的克隆进行培养并抽提质粒进行测序,测序正确的质粒命名为pUC19‑F1‑F2;用SpeI和HindIII酶切步骤(3)中获得的pUC19‑F3和pUC19‑F4,回收pUC19‑F3的大片段和pUC19‑F4的小片段,使用浓度为1%w/v琼脂糖凝胶电泳检测DNA的质量,然后使用T4DNA连接酶连接经过回收的DNA,并将连接产物转化感受态HB101,将PCR鉴定为阳性的克隆进行培养并抽提质粒进行测序,测序正确的质粒命名为pUC19‑F3‑F4;用AatII和HindIII酶切pUC19‑F1‑F2和pUC19‑F3‑F4,回收pUC19‑F1‑F2的大片段和pUC19‑F3‑F4的大片段,使用浓度为1%w/v琼脂糖凝胶电泳检测DNA的质量,然后使用 T4DNA连接酶连接经过回收的DNA,并将连接产物转化感受态HB101,将PCR鉴定为阳性的克隆进行培养并抽提质粒进行测序,测序正确的质粒命名为pUC19‑F1‑F2‑F3‑F4;用XbaI和HindIII酶切pUC19‑F1‑F2‑F3‑F4和pACYC177,分别使用琼脂糖凝胶回收试剂盒回收经过酶切的pUC19‑F1‑F2‑F3‑F4和经过酶切的pACYC177,使用浓度为1%w/v琼脂糖凝胶电泳检测DNA的质量,然后使用T4DNA连接酶连接经过回收的DNA,并将连接产物转化感受态HB101,将PCR鉴定为阳性的克隆进行培养并抽提质粒进行测序,测序正确的质粒命名为pACYC‑EV71‑FL;(5)分别带有eGFP和DsRed标签的EV71全长感染性克隆的构建:以带有eGFP和DsRed基因的质粒为模版,使用PrimeSTAR HS酶,分别使用特异引物扩增eGFP和DsRed基因片段,两种荧光标签序列为SEQ ID NO:14、SEQ ID NO:15所示,扩增eGFP的引物为SEQ ID NO:16、SEQ ID NO:17,扩增DsRed的引物为SEQ ID NO:18、SEQ ID NO:19,使用浓度为1%w/v琼脂糖凝胶电泳检测RT‑PCR产物,并使用琼脂糖凝胶回收试剂盒分别回收DNA片段,使用Thermo Scientific NanoDrop2000测定DNA的浓度,使用浓度为1%w/v的琼脂糖凝胶电泳检测DNA的质量,并于‑20℃保存备用;PCR的反应体系均为5×PS buffer:10μl,dNTP:4μl,引物:0.5μl,引物:0.5μl,模板:0.5μl,PrimeSTAR HS酶:0.5μl,水:34μl。扩增条件为:98℃30s,94℃10s,55℃15s,72℃1min,72℃10min,16℃10min,30个循环;将获得的eGFP基因片段和DsRed基因片段和步骤(4)中的pACYC177‑EV71‑FL分别为用SphI和MluI酶切,使用琼脂糖凝胶回收试剂盒回收经过酶切的eGFP基因片段、DsRed基因片段和pACYC177‑EV71‑FL,使用浓度为1%w/v琼脂糖凝胶电泳检测DNA的质量,然后使用T4DNA连接酶连接经过回收的DNA片段,并将连接产物转化感受态HB101,将PCR鉴定为阳性的克隆进行培养并抽提质粒进行测序,测序正确的质粒命名为pACYC177‑EV71‑eGFP‑FL和pACYC177‑EV71‑DsRed‑FL。
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