发明名称 小鼠卵巢表面上皮细胞体外自发恶性转化模型建立技术
摘要 本发明公开了小鼠卵巢表面上皮细胞体外自发恶性转化模型建立技术,包括以下步骤:首先是明确小鼠卵巢表面上皮细胞体外恶性转化阶段;然后是小鼠卵巢表面上皮细胞体外恶性转化的鉴定。本发明技术方案,为更好地了解小鼠卵巢表面上皮细胞恶性转化各阶段特征,及深入研究上皮细胞性卵巢癌的发生发展机制提供了新的实验模型,有助于寻找卵巢癌的早期诊断和防治效果的生物标志物。
申请公布号 CN103525755A 申请公布日期 2014.01.22
申请号 CN201310482976.2 申请日期 2013.10.16
申请人 苏州大学 发明人 李冰燕;张鹤美;张增利;王萍;胡志勇
分类号 C12N5/071(2010.01)I 主分类号 C12N5/071(2010.01)I
代理机构 南京经纬专利商标代理有限公司 32200 代理人 曹毅
主权项 小鼠卵巢表面上皮细胞体外自发恶性转化模型建立技术,其特征在于,包括以下步骤:a.小鼠卵巢表面上皮细胞体外恶转化阶段步骤1)原代小鼠卵巢表面上皮细胞:首先在超净台下,取4只6 ‑ 8 周龄未生育过的健康雌性C57BL/6小鼠的卵巢,放置在含400 IU/ml 青霉素、链霉素的PBS(1000 ml 双蒸水, NaCl 8.0 g, KCl 0.2 g, Na2HPO4·12H2O 3.48 g , KH2PO4 0.2 g , PH为7.4)缓冲液中;然后用无菌的PBS溶液轻轻冲洗卵巢3次,剥离残留的输卵管、脂肪组织及卵巢被膜,将剥离后的卵巢放置在装有胰酶(0.25 % 胰酶+EDTA, 37℃预热)的1.5 ml EP 管中,在37℃含有5 % 二氧化碳的培养箱中消化,为使卵巢表面充分接触胰酶,应尽量使卵巢分离开来; 30 min 后,从培养箱中取出1.5 ml EP 管,上下摇动10 次左右经,取出卵巢并将其转移到另一个装有胰酶(0.25 % 胰酶+EDTA)的1.5 ml EP 管中进行第二次消化, 在原1.5 ml EP 管中加入完全培养基终止消化,将包含有上皮细胞的液体离心(1000 r/min,5 min),弃上层液,加入1 ml 完全培养基缓慢吹打6 ‑ 10 次,收集含小鼠卵巢表面上皮细胞的悬液,移入35 mm 培养皿,在37℃含有5 % 二氧化碳的培养箱中孵育;第二次消化的步骤与第一次相同;最后,在实验的第2 d 应尽量避免移动培养皿,利于细胞贴壁生长,同时能够维持细胞周围的微环境稳定, 在实验的第3 d 根据细胞生长情况换液, 细胞密度达80%时,使用免疫荧光法检测其上皮细胞标志物Pan‑keratin的表达,阳性率达95%,鹅卵石样立方上皮细胞达80%以上时,进行下述的长期传代培养; 步骤2)早期传代的小鼠卵巢表面上皮细胞:是接种代数小于15代的细胞,形态多为鹅卵石立方样上皮细胞,细胞核规则椭圆形,按2:3比例传代,时间间隔5 ‑ 7 d,使用半量换液法,即一半新鲜DMED/F12完全培养基,一半培养皿中发黄的培养基,细胞的染色体数目多为40条;步骤3)中期传代的小鼠卵巢表面上皮细胞:是接种代数在16至84代之间的细胞,形态为立方形与细长梭形细胞夹杂存在,出现较多多核细胞,核仁增多,按1:2比例传代;随代数增加,细胞的生长速度加快,35代后改用不加生长因子的DMED/F12培养基,60代后传代比例为1:5至1:8,时间间隔为3 ‑ 5 d;细胞的染色体数目多为二倍体或三倍体,平板克隆形成能力明显提高,但是还没有软琼脂克隆形成能力;步骤4)晚期传代的小鼠卵巢表面上皮细胞:是接种代数大于85的细胞,形态多呈细长梭形,按1:10比例传代,时间间隔为3 ‑ 5 d,使用含有10%胎牛血清的DMED/F12培养基;细胞的染色体数目多为超四倍体,具有软琼脂克隆形成能力;b.小鼠卵巢表面上皮细胞体外恶性转化鉴定步骤1)细胞转化灶:是由密集而重叠的细胞组成,在透光检查时,用肉眼均可见有大小不等的白色斑块“转化灶”;显微镜下观察,细胞转化后胞体增大,成多边形生长无方向性,失去接触抑制,向三维空间延伸排列,细胞相互重叠;在转化灶边缘,转化细胞与正常细胞界限分明,形态区别明显;步骤2)染色体核型分析:正常的小鼠染色体核型为40XX(XY),使用常规染色体制片技术Giemsa染色,观察已发生恶性转化的卵巢表面上皮细胞的染色体多为超四倍体;步骤3)软琼脂克隆形成:制备底层胶:用双蒸水配制出1.4%低熔点琼脂糖液,高压灭菌后,置于40℃水浴锅中平衡温度45 min;将(2 × 高糖DMEM + 20% 胎牛血清 + 2% Insulin‑Transferrin‑ Selenium)在40℃水浴锅中均衡温度45 min;将等体积的上述两种液体混匀,以制备含0.7%琼脂胶;将1.5 ml的上述混合液缓缓注入35 mm培养皿中,避免气泡产生,等待1 h以使胶完全凝固;制备上层胶:将上述0.7%琼脂胶在37 ℃水浴锅中均衡温度45 min;在无菌超净台中将早期、中期和晚期的小鼠卵巢表面上皮细胞以及阳性对照人卵巢癌细胞株SKOV‑3细胞用胰酶(0.25 % 胰酶+EDTA)消化,台盼蓝排染,血球计数板计数,用培养基调整体积使细胞数为105细胞/ml;将1 ml细胞悬液加入15 ml离心管中,然后加入3 ml完全培养基与3 ml的0.7% 琼脂胶;轻柔吹打混匀;在培养皿底层胶的上面缓缓注入1.5 ml上述混匀液,避免气泡产生,每组设定3个平行样,置于超净台中(室温25℃)90 min,待上层胶凝固后,在上层轻轻滴入500 μL DMED/F12完全培养基;将培养皿置于37℃、5% 二氧化碳的培养箱中培养,期间每隔3 d,补加0.5 mL DMED/F12完全培养基;培养10 d后,把平皿置于倒置显微镜下,计数克隆直径>15μm的克隆数;每组设定3个平行样,独立实验重复3次;软琼脂克隆形成率=(克隆形成数/接种细胞数) х100%; 步骤4)体外恶性转化能力判断:与早期和中期小鼠卵巢表面上皮细胞相比较,晚期细胞的软琼脂克隆形成率明显增高,与阳性对照人卵巢癌细胞株SKOV‑3细胞相比较,虽然克隆形成率低,但是所形成克隆的体积明显偏大,多数直径是大于20μm的克隆,说明晚期的小鼠卵巢表面上皮细胞已发生体外恶性转化。
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