发明名称 注射用黄芪皂苷中单体化合物的分离方法
摘要 本发明公开了一种注射用黄芪皂苷中单体化合物的分离方法,本发明分离得到的单体化合物通过标准品比对、质谱、核磁共振氢谱和核磁共振碳谱等常规手段进行了结构鉴定,本发明所述的黄芪皂苷单体化合物可以用于注射用黄芪皂苷的质量控制,使该注射剂的化学物质基础更清楚,提高用药安全。
申请公布号 CN102241685B 申请公布日期 2013.11.06
申请号 CN201010169411.5 申请日期 2010.05.11
申请人 四川科伦药业股份有限公司 发明人 傅予;丁立生;彭树林;谭兴根;胡思玉;梁隆
分类号 C07D493/04(2006.01)I;C07J17/00(2006.01)I;C07J53/00(2006.01)I;C07H17/065(2006.01)I;C07H1/08(2006.01)I;C07H17/07(2006.01)I 主分类号 C07D493/04(2006.01)I
代理机构 北京三聚阳光知识产权代理有限公司 11250 代理人 张韬
主权项 一种注射用黄芪皂苷中单体化合物的分离方法,其特征在于该方法包括如下步骤:取黄芪药材20kg,切片,加体积浓度为70%的含水乙醇8倍回流提取,提取液除去乙醇,重新加入乙醇至混合溶液的乙醇体积含量至65%进行沉淀和过滤,滤液调节至pH9.0后沉淀过滤,滤液调节至pH7.0左右,按原料药/水为1.5/1的量加水混合后,在5℃低温下沉淀后过滤,滤液用大孔吸附树脂D‑101吸附,以30%浓度的含水乙醇洗脱至洗脱液几乎无色除杂,再以75%浓度的含水乙醇解吸附洗脱并收集,将除去乙醇后的解吸附浓缩溶液调节pH至10.0后,用经水饱和的正丁醇提取,提取液除去正丁醇后用丙酮‑乙醚(1:1)进行沉淀,分离沉淀物为供注射剂用的黄芪皂苷;取黄芪皂苷100g先用水1000ml分散,用分析纯的乙酸乙酯萃取3次,每次500ml,合并乙酸乙酯萃取液,回收乙酸乙酯得到乙酸乙酯萃取物15g;萃取后的水相用分析纯的正丁醇萃取3次,每次500ml,合并正丁醇萃取液,回收正丁醇得到正丁醇萃取物65g;将乙酸乙酯萃取物15g经正相硅胶柱层析分离,体积比为95:5→65:35的氯仿‑甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为8倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为15:1和4:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前2倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份A,依次接下来的1.2倍柱体积、0.8倍柱体积、0.8倍柱体积、1.2倍柱体积、2倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份B、组份C、组份D、组份E和组份F,回收溶剂后,分别得到组份A:0.1g、组份B:1.4g、组份C:2.8g、组份D:4.0g、组份E:1.5g、组份F:1.8g6个组份;将正丁醇萃取物65g经正相硅胶柱层析分离,体积比为85:15→30:70的氯仿‑甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为10:1和3:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前3倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份G,依次接下来的2倍柱体积、1倍柱体积、1倍柱体积、3倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份H、组份I、组份J和组份K,回收溶剂后,得到组份G:1.4g、组份H:3.2g、组份I:9.5g、组份J:12.0g、组份K:2.5g5个组份;将组份A 0.1g经正相硅胶柱层析分离,用分析纯的氯仿洗脱,洗脱液用量为12倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为10:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4.8倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份A‑1,依次接下来的1.2倍柱体积、6倍柱体积的洗脱液斑点 相近,分别收集为组份A‑2和组份A‑3,将其中组分A‑2回收溶剂后,得到单体化合物10mg,经结构鉴定为:10‑甲氧基美迪紫檀素;将组份B 1.4g经正相硅胶柱层析分离,以体积比为95:5→65:35的氯仿‑甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为6:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份B‑1,依次接下来的2倍柱体积、4倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份B‑2和组份B‑3,将其中组分B‑2回收溶剂后,再用120ml甲醇重结晶得到单体化合物95mg,经结构鉴定为:胡萝卜苷;将组份C 2.8g经正相硅胶柱层析分离,以体积比为100:0→60:40的氯仿‑甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为8倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为6:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前2.4倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C‑1,依次接下来的2.4倍柱体积、3.2倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C‑2和组份C‑3,回收溶剂后,得到组份C‑1:0.3g、组份C‑2:0.5g、组份C‑3:1.2g3个组份;将组份C‑1 0.3g经Sephadex LH‑20凝胶柱层析分离,用分析纯的甲醇洗脱,洗脱液用量为15倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为6:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4.5倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C‑1‑1,依次接下来的1.5倍柱体积、9倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C‑1‑2和组份C‑1‑3,将其中组分C‑1‑2回收溶剂后,得到单体化合物50mg,经结构鉴定为:乙酰黄芪皂苷Ⅰ;将组份C‑2 0.5g经Sephadex LH‑20凝胶柱层析分离,用分析纯的甲醇洗脱,洗脱液用量为15倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为5:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前7.5倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C‑2‑1,依次接下来的3倍柱体积、4.5倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C‑2‑2和组份C‑2‑3,将其中组分C‑2‑2回收溶剂后,得到单体化合物105mg,经结构鉴定为:2‑羟基‑3,4‑二甲氧基异黄烷‑7‑O‑β‑D‑吡喃葡萄糖苷;将组份C‑3 1.2g经正相硅胶柱层析分离,以体积比为100:0→55:45的氯仿‑甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为12倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为5:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前3.6倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份C‑3‑1,依次接下来的3倍柱体积、5.4 倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份C‑3‑2和组份C‑3‑3,将其中组分C‑3‑2回收溶剂后,得到单体化合物310mg,经结构鉴定为:9,10‑二甲氧基紫檀烷‑3‑O‑β‑D‑吡喃葡萄糖苷;将组份E 1.5g经甲醇50ml重结晶得到单体化合物800mg,经结构鉴定为:毛蕊异黄酮‑7‑O‑β‑D‑吡喃葡萄糖苷;将组份F 1.8g经硅胶柱层析分离,以体积比为90:10→55:45的氯仿‑甲醇梯度洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为4:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4.5倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份F‑1,依次接下来的1.5倍柱体积、4倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份F‑2和组份F‑3,将组分F‑2回收溶剂后,得到单体化合物750mg,经结构鉴定为:黄芪甲苷;将组份H 3.2g经甲醇100ml重结晶得到单体化合物1.8g,经结构鉴定为:芒柄花苷;将组份K 2.5g经Sephadex LH‑20凝胶柱层析分离,用分析纯的甲醇洗脱,洗脱液用量为10倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为3:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前6倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份K‑1,接下来的4倍柱体积的洗脱液斑点相近,收集为组份K‑2,回收溶剂后,得到组份K‑1:1.1g、组份K‑2:0.8g2个组份;将组份K‑1 1.1g经反相C18硅胶柱层析分离,以体积比为15:85→85:15的甲醇‑水梯度洗脱,洗脱液用量为12倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为3:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前4.8倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份K‑1‑1,依次接下来的1倍柱体积、6.2倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份K‑1‑2和组份K‑1‑3,将组分K‑1‑2回收溶剂后,得到单体化合物95mg,经结构鉴定为:环黄芪苷E;将组份K‑2 0.8g经反相C18硅胶柱层析分离,以体积比为15:85→90:10的甲醇‑水梯度洗脱,洗脱液用量为15倍柱体积,在洗脱过程中,一边洗脱一边以每次0.1个柱体积的洗脱液进行正相硅胶薄层层析检查,以体积比为3:1的氯仿:甲醇为展开剂,结果显示,前5.2倍柱体积的洗脱液的斑点相近,收集为组份K‑2‑1,依次接下来的1.8倍柱体积、8倍柱体积的洗脱液斑点相近,分别收集为组份K‑2‑2和组份K‑2‑3,将组分K‑2‑2回收溶剂后,得到单体化合物70mg,经结构鉴定为:黄芪皂苷Ⅵ。
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