发明名称 甲基化敏感扩增多态性技术在转基因植物毒性分析的应用
摘要 本发明涉及甲基化敏感扩增多态性技术在转基因植物毒性分析的应用,具体提供了一种转基因植物非预期毒性的分析预测方法,其检测方法为:1、获得转基因植株甲基化敏感多态性差异片段;2、转基因植株甲基化差异DNA片段的回收、克隆及测序;3、利用转基因植株甲基化差异DNA片段分析转基因植株的非预期毒性。本发明将甲基化敏感扩增多态性技术用于分析转基因植物的非预期毒性,建立了分析转基因植株中是否具有非预期毒性的技术体系,有助于转基因植株的监测和推广应用,具有重要的经济效益和社会效益。
申请公布号 CN102080128B 申请公布日期 2012.11.07
申请号 CN201010562955.8 申请日期 2010.11.29
申请人 山东农业大学 发明人 白吉刚;林荣呈;代爱华;李倩;张静
分类号 C12Q1/68(2006.01)I 主分类号 C12Q1/68(2006.01)I
代理机构 代理人
主权项 一种转基因植物非预期毒性的分析方法,其特征在于包括以下步骤:(1)转基因植株甲基化敏感多态性差异片段的获得(1.1)转基因植株基因组DNA的提取在相同栽培条件下,培养转基因植株以及野生型受体,采用传统的CTAB法分别提取其基因组DNA;(1.2)转基因植株基因组DNA的酶切及连接合成以下引物序列:EcoR I接头1              5’‑CTCGTAGACTGCGTACC‑3’;EcoR I接头2              5’‑AATTGGTACG CAGTC‑3’;Msp I/Hpa II接头1        5’‑GATCATGAGTC CTGCT‑3’;Msp I/Hpa II接头2        5’‑CGAGCAGGAC TCATGA‑3’;将EcoR I接头1与EcoR I接头2用蒸馏水溶解并混匀后,置于95℃ 5min,然后在室温冷却,制得5pmol EcoR I接头;将Msp I/Hpa II接头1与Msp I/Hpa II接头2用蒸馏水溶解并混匀后,置于95℃ 5min,然后在室温冷却,制得50pmol Msp I/Hpa II接头;选取两个对甲基化敏感的同位酶Hpa II/Msp I分别与限制性内切酶EcoR I进行组合,对转基因植株以及野生型植株的基因组DNA在37℃双酶切6h;25μl酶切体系包括:1×buffer,1μg基因组DNA,1U EcoR I,1U Hpa II/Msp I;把基因组DNA的酶切片段与10μl连接混合物混匀后,在16℃连接过夜,然后在65℃保温15min终止反应;10μl连接混合物包括:5pmol EcoR I接头,50pmol Hpa II/Msp I接头,1U T4 DNA ligase,1×buffer for T4 DNA ligase;(1.3)预扩增分别以转基因植株以及野生型植株基因组DNA的酶切连接产物为模板,利用EcoR I预扩增引物5’‑GACTGCGTACCAATTCA‑3’和Hpa II/Msp I预扩增引物5’‑ATCATGAGTCCTGCTCGG‑3’进行预扩增;25μl反应体系包括1×PCR buffer,0.4mM dNTP,1.2mM MgCl2,2μl酶切连接产物,50ng EcoR I预扩增引物,50ng Hpa II/Msp I预扩增引物,1U Taq聚合酶;预扩增条件为:94℃变性2min后,按以下参数扩增30轮循环:94℃ 30sec,56℃ 30sec,72℃ 60sec,最后在72℃延伸10min;用TE buffer按1∶10的比例稀释预扩增产物;(1.4)选择性PCR扩增以稀释的预扩增产物为模板,利用EcoR I选择性扩增引物在序列5’‑GACTGCGTACCAATTCA‑3’的3’端增加2‑3个碱基和Hpa II/Msp I选择性扩增引物在序列5’‑ATCATGAGTCCTGCTCGG‑3’的3’端增加2‑4个碱基进行选择性PCR扩增;25μl反应体系包括1×PCR buffer,0.4mM dNTP,1.2mM MgCl2,4μl预扩增产物,50ng EcoR I选择性扩增 引物,50ng Hpa II/Msp I选择性扩增引物,1U Taq聚合酶;按下列参数进行PCR循环:在94℃变性2min后,按以下参数先扩增13轮循环:94℃ 30sec,65℃ 30sec,每轮循环温度递减0.7℃,72℃ 60sec;最后按下列参数扩增23轮循环:94℃ 30sec,55℃ 30sec,72℃ 60sec;(1.5)变性聚丙烯酰胺凝胶电泳使用Bio‑Rad公司的测序电泳装置Sequi‑Gen GT,对选择性PCR扩增产物进行变性聚丙烯酰胺凝胶电泳;上样6μl,恒功率70W电泳3h;电泳结束后,进行银染;对酶切片段进行MSAP分析能够反应酶切位点的甲基化状态及程度,将EcoR I+Hpa II和EcoR I+Msp I酶切产物的扩增条带划分为4种类型:类型I,EcoR I+HpaII和EcoR I+Msp I两条泳道均有带,无甲基化发生;类型II,EcoR I+Hpa II泳道有带而EcoR I+Msp I泳道无带,单链DNA外部甲基化;类型III,EcoR I+Hpa II泳道无带而EcoR I+Msp I泳道有带,双链DNA内部甲基化;类型IV,EcoR I+Hpa II和EcoR I+Msp I两条泳道均无带,双链DNA的外部甲基化;比较转基因植株以及野生型植株EcoR I+Hpa II和EcoR I+Msp I双泳道的带型,重点分析转基因植株中无甲基化、野生型植株中甲基化的DNA差异片段,用一次性手术刀片从聚丙烯酰胺凝胶挖取转基因植株甲基化敏感多态性差异片段;(2)转基因植株甲基化差异DNA片段的回收、克隆及测序(2.1)甲基化差异DNA片段的回收将挖取的转基因植株甲基化敏感多态性差异片段置于30μl双蒸水中,煮沸5min;缓慢降至室温后离心,收集上清液;取4μl上清液为模板进行PCR扩增,PCR反应条件与预扩增PCR反应一致;按照上海生工生物工程技术服务有限公司DNA回收纯化试剂盒说明书对PCR产物回收纯化;(2.2)甲基化差异DNA片段的克隆按照上海生工生物工程技术服务有限公司连接试剂盒说明书,将回收纯化的PCR产物连接到pUCm‑T载体,转化大肠杆菌菌株DH5α;(2.3)甲基化差异DNA片段的测序(3)转基因植株非预期毒性的分析(3.1)打开KEGG数据库,输入转基因植株中无甲基化、而野生型植株中甲基化的DNA序列,分析该序列所涉及的代谢途径是否与毒性物质的合成有关;若序列所涉及的代谢途径与毒性物质的合成有关,说明转基因植株可能具有非预期毒性;(3.2)Southern杂交验证采用传统的CTAB法,分别提取转基因植株、野生型植株基因组DNA;若转基因植株甲基化差异DNA片段的序列所涉及的代谢途径与毒性物质的合成有关,将该序列按照Roche公司 地高辛标记与检测试剂盒说明书标记成探针后,分别与转基因植株、野生型植株基因组DNA进行杂交;若杂交结果呈阳性,说明转基因植株甲基化差异DNA片段是PCR扩增的特异性产物,转基因植株具有非预期毒性。
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