发明名称 红叶石楠离体叶片体细胞胚诱导快繁培养方法
摘要 一种红叶石楠离体叶片体细胞胚诱导快繁培养方法,包括以下步骤:(1)建立红叶石楠无菌试管苗再生体系;(2)建立离体叶片体胚和不定芽诱导的高频快繁体系;(3)试管苗生根炼苗移栽。本发明所述的红叶石楠离体叶片体细胞胚诱导快繁培养方法通过选择适宜外植体、改良基本培养基及成分、调整培养条件等配套措施,使种子繁殖困难的红叶石楠通过体细胞胚胎发生途径快繁,并使得植株移栽成活率达到95%以上,种苗生长健壮,可有效解决优良种苗种质退化问题,也可为生产上提供大量优质提纯复壮的脱毒苗木,此外,还可为红叶石楠遗传转化或诱变育种选育新品种提供一个理想的受体体系。
申请公布号 CN102124955A 申请公布日期 2011.07.20
申请号 CN201110033701.1 申请日期 2011.01.31
申请人 江苏农林职业技术学院;山东省林业科学研究院 发明人 梁慧敏;夏阳;燕丽萍;朱晓花;李双云;刘兰;刘艳;刘进华
分类号 A01H4/00(2006.01)I 主分类号 A01H4/00(2006.01)I
代理机构 南京纵横知识产权代理有限公司 32224 代理人 董建林;严志平
主权项 一种红叶石楠离体叶片体细胞胚诱导快繁培养方法,其特征在于,包括以下步骤:(1)建立红叶石楠无菌试管苗再生体系:(1.1)选材与材料处理:于春季晴天上午选取生长健壮、性状表现优良的单株,用5%多菌灵喷洒选取的枝条,每周喷洒一次,连续喷洒一个月,之后剪取刚萌发的无病虫嫩枝,包括前端未木质化和半木质化部分,除去多余的茎叶,将需要部分用洗洁精溶液浸泡5‑10min,然后用棉球仔细清洗后,再用流水冲洗1小时,最后用2%NaClO溶液浸泡15‑20min,再用无菌水冲洗干净,用灭菌滤纸吸干水分后备用;(1.2)选材消毒与芽启动萌发培养:将步骤(1.1)所述的处理过的材料置于超净工作台上,用75%的酒精消毒15‑20s,无菌水冲洗5‑6次,再用0.1%升汞灭菌8‑15min,无菌水冲洗6—8次,用灭菌滤纸吸干水分,然后剪取1‑2cm左右带一个腋芽或顶芽的茎段,以生态学下段垂直插入芽启动培养基上,每瓶接种3个外植体,诱导顶芽和腋芽萌发,在培养室温度白天25±2℃ ,夜晚20±2℃,光照强度1500—2000 lx,光照时间14 h/d的条件下,进行15‑20d的培养,茎段腋芽开始萌动,茎尖明显伸长,40‑50d后芽点长成2‑4cm的新梢,形成无菌试管苗;(1.3)无菌试管苗增殖培养:将步骤(1.2)诱导出的无菌试管苗去掉基部叶片,切成含1‑2个腋芽的茎段或茎尖接种在试管苗增殖培养基上,25‑28d后继代1次,通过上述试管苗增殖培养基的NAA浓度在0.1~0.5mgL‑1的可控范围内调整变化,获得大量无菌试管苗,建立起红叶石楠无菌试管苗再生体系;(2)建立离体叶片体胚和不定芽诱导的高频快繁体系:(2.1)诱导体胚和不定芽的形成:以试管苗第3到第6片展开叶为外植体,叶片带短叶柄,将叶片周围带锯齿状叶缘切去,之后做以下处理:一、叶片沿主脉切成左右两半,视叶片大小轻划1‑2刀;二、叶片沿主脉横切2‑3刀,分别接种在第一诱导体胚和/或不定芽形成培养基、第二诱导体胚和/或不定芽形成培养基和第三诱导体胚和/或不定芽形成培养基上,要求外植体叶背朝下紧贴各自的培养基放置,于黑暗培养7‑10d,诱导体胚的形成,于黑暗培养15‑20d,诱导不定芽的形成;(2.2)体胚和不定芽的生长与分化:将第一诱导体胚和/或不定芽形成培养基和第二诱导体胚和/或不定芽形成培养基上培养的外植体转接到第一体胚和/或不定芽生长与分化培养基上,然后放入人工气候箱,温度为10±2℃时,暗培养3‑5d之后转入培养室暗培养35‑40d,或直接在培养室暗培养40‑45d,中间继代一次;而将第三诱导体胚和/或不定芽形成培养基上的外植体转接到第二体胚和/或不定芽生长与分化培养基上,在培养室培养40‑45d,中间继代一次,光照强度1000—1500lx,经过上述第一体胚和/或不定芽生长与分化培养基和第二体胚和/或不定芽生长与分化培养的培养,在外植体上形成许多丛生芽,芽高在2cm~5cm;(2.3)丛生芽增殖快繁培养:将上述步骤(2.2)诱导形成的丛生芽切成含1‑2个腋芽的茎段或茎尖转接到试管苗增殖培养基或第二体胚和/或不定芽生长与分化培养基上交替继代,进行增殖快繁培养,每18‑22d继代一次,增殖频率为10‑15;(3)试管苗生根炼苗移栽:(3.1)壮苗生根培养:将上述步骤(2.3)生长发育健壮的长到3‑4cm后的丛生芽切成单株转接到壮苗生根培养基上,培养25‑35d,保证茎叶发育正常,根系生长健壮,根长至1.5cm以上时,进行炼苗移栽;(3.2)炼苗移栽:首先将试管苗瓶盖打开,在培养室适应1d后移到遮光度70‑80%的遮荫网塑料大棚,在温室条件下炼苗2‑3d,用镊子将苗夹出,清水洗去基部残留的培养基,移栽到装有混合育苗基质的穴盘中,利用间歇喷雾装置或人工喷水保持相对湿度在80%以上,经驯化炼苗5‑10d后,在新根新芽萌出后,逐渐减少浇水次数并移栽到花盆进行常规管理;所述的芽启动培养基为:改良MS + 0.5~1.0 mgL‑1BA + 0.5~1.0mgL‑1KT + 0.1~0.2mgL‑1NAA + 6.0~7.0gL‑1琼脂 + 30gL‑1蔗糖, 且pH值为5.8~6.0;所述的试管苗增殖培养基为:改良MS + 1.0~2.0mgL‑1BA + 1.0~2.0mgL‑1KT  + 0.1~0.5mgL‑1NAA + 6.0~7.0gL‑1琼脂 + 30gL‑1蔗糖, 且pH值为5.8~6.0;所述的第一诱导体胚和/或不定芽形成培养基为:改良MS + 0.5mgL‑12,4‑D + 0.5~1.0mgL‑1BA + 0.5~2.0mgL‑1NAA + 3.0~3.5gL‑1phytagel + 20gL‑1蔗糖, 且pH值为5.8~6.0;所述的第二诱导体胚和/或不定芽形成培养基为:改良MS + 0.1mgL‑12,4‑D + 0.5mgL‑1BA + 10~30 mgL‑1NAA + 3.0~3.5gL‑1phytagel + 20gL‑1蔗糖, 且pH值为5.8~6.0;所述的第三诱导体胚和/或不定芽形成培养基为:改良MS + 2.0~4.0mgL‑1 NAA + 0.2~0.5mgL‑12,4‑D + 0.5~2.0mgL‑1BA+ 0.5~2.0 mgL‑1KT+ 6.0~7.0gL‑1琼脂 + 30gL‑1蔗糖, 且pH值为5.8~6.0;所述的第一体胚和/或不定芽生长与分化培养基为:改良MS + 2.0~4.0mg L‑1BA + 3.0~3.5gL‑1phytagel + 20gL‑1蔗糖,且pH值为5.8~6.0;所述的第二体胚和/或不定芽生长与分化培养基为:改良MS + 2.0mgL‑1 BA + 1.0 mgL‑1 IBA + 2.0 mgL‑1 KT + 6.0~7.0gL‑1琼脂 + 30gL‑1蔗糖, 且pH值为5.8~6.0;所述的壮苗生根培养基为:1/2改良MS + 0.2~0.5mgL‑1 IBA + 0~0.05mgL‑1NAA + 6.0~7.0gL‑1琼脂 + 20gL‑1蔗糖, 且pH值为5.8~6.0。
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