发明名称 一种水溶性抗生素的分离纯化制备方法
摘要 本发明公开了一种水溶性抗生素的分离纯化制备方法。该方法包括九个步骤:(1)制备培养基;(2)制备发酵种子菌液;(3)扩大发酵的条件;(4)抗生素ZwA的第一次纯化萃取法;(5)抗生素ZwA的第二次纯化大孔树脂法;(6)抗生素ZwA的第三次纯化硅胶层析法;(7)高效液相色谱法纯度检测;(8)质谱法分子量定性分析;(9)得到制备出包含分子量为364和382两种分子结构的水溶性抗生素的结论。本发明所制备的水溶性抗生素纯度高,与苏云金芽胞杆菌的Cryl A、Cry1 B、Cry1 C等晶体蛋白协同作用可以提高对农业害虫的生物杀虫效果;另外对大肠杆菌和引起小儿肺炎的金黄色葡萄球菌也有抑制效果。
申请公布号 CN103805645B 申请公布日期 2016.04.06
申请号 CN201410082586.0 申请日期 2014.03.09
申请人 桂林理工大学 发明人 郝再彬;李霞;严丽;张杰;宋福平
分类号 C12P13/00(2006.01)I;C07K1/20(2006.01)I;C07K1/14(2006.01)I;C07K1/16(2006.01)I;C12R1/18(2006.01)N 主分类号 C12P13/00(2006.01)I
代理机构 代理人
主权项 一种水溶性抗生素的分离纯化制备方法,其特征在于具体步骤为:<b>(1)</b><b>制备培养基</b>1.1斜面培养基:牛肉膏3‑6g,蛋白胨5‑15g,氯化钠3‑7g,琼脂粉10‑20g,pH7.0‑7.2,定容至1L,121℃灭菌30min备用;1.2菌株HD‑1种子培养基:酵母膏3‑7g,蚕蛹蛋白膏5‑15 g,氯化钠5‑15 g,pH7.0‑7.2,定容至1L,121℃灭菌30min备用;1.3初始发酵培养基:葡萄糖10‑30g,蚕蛹蛋白膏10‑30g,CaCL<sub>2 </sub>0.05‑0.10g,K<sub>2</sub>HPO<sub>4</sub> 1‑2g,MgSO<sub>4</sub> 0.1‑0.3g,MnSO<sub>4</sub> 0.05‑0.1g,pH 7.0‑7.2,定容至1L,121℃灭菌30min备用;1.4扩大生产发酵培养基:蚕蛹蛋白膏7‑11g,葡萄糖2‑5g,氯化钠 1‑4g,MgSO<sub>4</sub>·7H<sub>2</sub>O 0.2‑0.4g,K<sub>2</sub>HPO<sub>4</sub> 0.2‑0.4g,MnSO<sub>4</sub> 0.02‑0.07g,pH7.5,定容至1L,121℃灭菌30min备用;1.5供试菌活化培养基:牛肉膏2‑8g,蛋白胨5‑15g,氯化钠2‑8g,pH 7.0‑7.2,定容至1L,121℃灭菌30min备用;1.6抑菌活性测定固体培养基:牛肉膏2‑8 g,蛋白胨5‑15 g,氯化钠5‑20 g,琼脂粉10‑20g,pH 7.0‑7.2,定容至1L,121℃灭菌30min备用;(2)制备发酵种子菌液首先,将保存于‑20℃冰箱的甘油保藏菌种HD‑1放到室温复苏,至完全解冻,将其接种到LB斜面培养基上,30℃过夜培养,取出后保存于4℃冰箱备用;然后,从保存好的HD‑1斜面培养基上取0.5㎝×1.0㎝大小的斜面培养物接种于300mL摇瓶中,内含有种子培养基100mL,置于220r/min摇床30℃培养10‑20 h;2.1菌株HD‑1发酵液的制备将活化好的HD‑1种子培养基以2%的接种量接种到灭过菌的初始发酵培养基中,培养基不超过容器体积的2/3,30℃摇瓶培养20‑40 h,然后,5000‑10000r/min离心5‑15min、收集上清,4℃冰箱保存,此过程有抗生素生物合成;2.2初次抑菌活性检测采用管碟法,以草生欧文氏杆菌为指示菌,检测浓缩10倍后的HD‑1发酵液上清液的抑菌活性,空白培养基作对照,将甘油保存的草生欧文氏杆菌菌种接种到活化培养基中,30℃摇瓶培养10‑15h,然后2%的接种量将菌液加入到冷却至45℃的抑菌活性测定固体培养基中,轻摇混匀,先在灭菌的玻璃培养皿内加注无菌固体培养基作为底层,冷却后摆放牛津环,再将混匀的加菌液的固体培养基轻轻加入到底层培养基上,双层培养基都要薄而均匀,静置冷却后,用灭过菌的镊子轻轻取下牛津环,在孔中加入待测液,液面和上层培养基面齐平,然后,在28℃恒温培养箱内培养10‑15h,测其抑菌圈直径大小,抑菌直径为抑菌圈外径减去牛津环外径,在做抑菌试验时,将上清液95℃水浴15min后,用1mol/L的NaOH调至中性或偏碱性,验证抗生素的存在,由于ZwA的浓度与抑菌圈直径存在线性关系,因此,将以抑菌圈的直径来间接表示ZwA浓度;<b>(3)</b><b>扩大发酵的条件</b>3.1发酵培养基:采用18L发酵罐培养,罐内装培养基不能超过体积的2/3,以5‑15L为宜;3.2发酵时间:将活化好的摇瓶种子培养基接种到扩大生产发酵培养基中,培养20‑40h;3.3培养温度:将活化好的摇瓶种子培养基接种到扩大生产发酵培养基中,在20℃‑40℃恒温下培养;3.4培养基初始pH:将已接种的扩大生产发酵培养基,用1mol/L的HCl或1mol/L的NaOH调pH值5.0‑10.0;<b>(4)</b><b>抗生素ZwA</b><b>的第一次纯化萃取法</b>取10L发酵液分批次5000‑10000r/min离心,5‑20min,回收上清液,用1mol/L的HCl调至pH4.0,在50℃下真空浓缩,真空度‑0.095‑‑0.088Mpa,浓缩至200mL,加入100mL无水乙醇,轻轻摇匀,静置1小时后再次5000‑10000r/min离心5‑20min,取上清,上清液用等体积的石油醚萃取后,收集水相,至无醇味和石油醚味,加水补至原体积,即得ZwA粗提液,做抑菌试验验证ZwA的存在,之后保存于4℃冰箱备用;<b>(5)</b><b>抗生素ZwA</b><b>的第二次纯化大孔树脂法</b>根据ZwA的水溶性强、弱极性等特点,选用非极性大孔树脂LX‑68M、LX‑22、LX‑762及LXA‑8对ZwA进行初步纯化;5.1大孔树脂预处理:称取一定量的湿重树脂,使用前均做预处理,流程如下,首先,将称好的树脂装入玻璃层析柱中(60cm×2cm),用2倍柱床体积的1mol/L的HCl溶液以1mL/min的流速对树脂层进行洗脱,并浸泡树脂4h,然后用去离子水以同样流速冲洗树脂,至流出水pH 呈中性;然后用2倍柱床体积的1mol/L的NaOH溶液以1mL/min的流速对树脂层进行洗脱,并浸泡树脂4 h,用去离子水以同样流速冲洗树脂,至流出水pH 呈中性;再用1倍柱床体积的乙醇浸泡树脂6h;用2倍柱床体积的乙醇以1mL/min 的流速通过树脂柱,再浸泡树脂4h;再用去离子水以同样流速洗至无乙醇味为止;5.2 ZwA的纯化:按树脂量与粗提液1:2(W/V)的比例,分别上样10mL,湿法装柱,室温静态吸附3h后,先用去离子水动态洗脱,洗脱体积初定4倍柱床体积,洗脱液为未吸附相,再用50%的乙醇洗脱4倍柱床体积,洗脱组分为A,再用无水乙醇洗脱4倍柱床体积,洗脱组分为B,洗脱时流速约0.5mL/min,分别收集洗脱液,减压浓缩后去离子水定容至10mL,对A和B分别做抑菌试验验证ZwA的存在,之后保存于4℃冰箱备用;<b>(6)</b><b>抗生素ZwA</b><b>的第三次纯化硅胶层析法</b>称取100‑140目硅胶150g,用无离子水浸泡3h,冲洗,抽干,再用浓盐酸洗涤以除去残留的杂质,然后用去离子水洗至中性,抽干,再用无水乙醇浸泡过夜,抽干,临用前120℃烘干至恒重,再用无离子水浸泡过夜即可装60cm×2cm层析柱;6.1装柱与ZwA的上样:采用湿法装柱,干法上柱;用无离子水将浸泡过夜的硅胶搅拌成匀浆,缓慢加入玻璃层析柱中,60cm×2cm层析柱,多余无离子水洗脱剂流出,上层加入4cm的石油醚,然后取5mL大孔树脂第二次纯化后的样品ZwA,加入适量干硅胶搅拌至干粉状,缓慢加入层析柱的上层石油醚液中,目的是使样品暂时与洗脱剂分开,避免洗脱剂夹带样品快速流下,装柱要确保层析柱均匀,实在、无气泡、无断层;柱床总高度约30‑50cm;6.2 ZwA的纯化:洗脱剂为乙酸乙酯:甲醇=70:30(V:V),洗脱速度为0.5mL/min,用部分收集器分段收集,每管10mL,以紫外吸收法在线监测ZwA样品的紫外吸收出现,以2%茚三酮比色法在565nm波长下检测ZwA样品的颜色出现,直到无ZwA样品的紫外吸收出现、无ZwA样品的颜色出现时,终止洗脱,共收集30管,根据颜色一致性合并为10管,对各管溶液做抑菌试验验证ZwA的存在,之后保存于4℃冰箱备用;6.3 ZwA样品的冷冻干燥处理:使用冷冻干燥机对上述各管液体进行冷冻干燥处理,冷冻干燥至无水成为干粉,之后保存于4℃冰箱备用;6.4茚三酮比色反应6.4.1配置pH6.7的磷酸盐缓冲溶液:分别称取磷酸二氢钾4.5350g和磷酸氢二钠11.9380g于小烧杯中,用少量去离子水溶解后,移入500ml容量瓶中,再用去离子水定容至刻度,摇匀备用,取55. 0ml磷酸二氢钾溶液与45. 0ml磷酸氢二钠溶液混合摇匀,即得到pH6.7的磷酸盐缓冲溶液;6.4.2配置2%茚三酮显色液:分别称取2.0000g茚三酮和1.0000g氯化铬,加入乙二醇缓慢加热至完全溶解,转入100ml容量瓶中,再用磷酸盐缓冲溶液定容至刻度,摇匀,放置过夜,次日用,若有沉淀,过滤后使用;6.4.3显色反应:取各管洗脱液分别0.5mL,2%茚三酮0.5mL,磷酸盐缓冲溶液1mL,于10mL带刻度试管中,摇匀后沸水浴15min,冷却10min,用去离子水定容至10mL,摇匀,稳定15min后测量,以洗脱剂作空白对照,用紫外分光光度计先进行全190‑800nm波长扫描,确定其最大紫外吸收波长,然后测定各样品在最大吸收波长下的吸光度A,绘制洗脱曲线;(7)高效液相色谱法纯度检测:7.1检测样品制备:分别取6.3的干粉样品,分别用1毫升无离子水溶解,备用;7.2高效液相色谱法检测:将7.1的10个组分别做HPLC检测,用面积归一法分析其纯度;色谱条件:反相C<sub>18</sub>分析柱,流动相为水:甲醇=85:15(V/V),紫外检测器,检测波长210nm,流度0.5mL/min,进样量10μL,柱温35℃;7.3再次用抑菌活性法检测:采用管碟法,对7.1的10个组分进行抑菌活性检测,进一步确定纯化后ZwA的富集区段;(8)质谱法分子量定性:质谱检测:称取0.0100g,用质谱检测仪鉴定其分子量;质谱检测条件:电喷雾离子源即ESI,毛细管电压为3.5kV, 锥孔电压为150V,离子源温度为100℃,干燥气温度为300℃,脱溶剂气体流速500L/h,锥孔气体流速为50L/h,水作溶剂;(9)结论:由(8)质谱分析图确定,所制得的水溶性抗生素中含有364和382两种分子量的分子结构;所述分子量为364的水溶性抗生素的分子结构为:<img file="764950dest_path_image001.GIF" wi="415" he="115" />;所述分子量为382的水溶性抗生素的分子结构为:<img file="682090dest_path_image002.GIF" wi="409" he="116" />。
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