发明名称 一种利用抗氧化剂筛选牛核移植供体细胞的方法
摘要 本发明涉及动物生殖和分子生物学操作技术领域。具体涉及牛体细胞核移植中供体细胞的选择方法。公开了一种利用抗氧化剂筛选牛核移植供体细胞的方法。为了提高牛核移植效率中的供体细胞的数量,本发明利用活体采样,接种法培养细胞,稳定传代的活力为OD值为0.609±0.053的第六代细胞,用浓度为100μmol/L的β-巯基乙醇处理细胞24h后的细胞作为供体细胞,为重构胚更好的发育奠定了基础。
申请公布号 CN102899353B 申请公布日期 2015.04.29
申请号 CN201110218955.0 申请日期 2011.07.30
申请人 华中农业大学 发明人 易建明;赵玲玲;宋海泉;杨利国;陶林林
分类号 C12N15/873(2010.01)I;C12N5/071(2010.01)I 主分类号 C12N15/873(2010.01)I
代理机构 武汉宇晨专利事务所 42001 代理人 张红兵
主权项 一种筛选牛核移植供体细胞的方法,其特征在于以下步骤:A、供体细胞的培养1)采样:用75%的酒精擦洗牛耳尖端4‑5cm<sup>2</sup>的组织,用眼科剪刀剪取组织,用75%的酒精冲洗组织三遍,再用含有双抗的磷酸盐缓冲液PBS冲洗三遍,放入细胞培养液‑1中,得到牛耳组织样品;2)利用接种法培养牛耳成纤维细胞:将上步所得的牛耳组织样品分别用75%酒精和1%双抗的PBS冲洗三次,置玻璃皿中,剔除毛发和表皮,用眼科剪剥取其真皮组织,用含1%双抗的PBS充分冲洗后剪至1mm<sup>3</sup>的小组织块,置于细胞培养液‑1中,于800r/min下离心3min,反复洗涤6‑8次,加入少量细胞培养液‑2,将离心洗涤后的组织块均匀铺于培养皿底部,吸出多余培养液,置于37.5℃,5%CO<sub>2</sub>饱和湿度的培养箱中孵育;孵育时间为8‑12h;再加入细胞培养液‑22.5‑3ml,每隔两天更换细胞培养液‑2一次;3)观察培养皿中组织块边缘是否有细胞长出,当细胞长满皿底95%以上时,剔除组织块;用胰蛋白酶消化上步所得细胞3‑5min,观察细胞是否变圆,并漂浮于培养液中,加入细胞培养液‑1终止消化,在1200r/min下离心5min,重复离心两次,将一个培养皿的细胞转移至两个新的培养皿中;4)在细胞传至2、6、13、20代时分别测定细胞活力,即MTT‑OD值测定,收集对数期生长的细胞,调整细胞悬液浓度为5.0×10<sup>4</sup>个/ml,每孔加入100ul,使待测细胞调密度为5000个/孔,边缘孔用无菌PBS填充;在5%CO<sub>2</sub>,37.5℃孵育,至细胞单层铺满96孔平底板的孔底,每孔加入20μlMTT溶液,继续培养4h,终止培养;小心吸去孔内培养液,每孔加入150μl二甲基亚砜,置摇床上低速振荡10min,使结晶物充分溶解;在酶联免疫检测仪OD490nm处测量各孔的吸光值,选MTT‑OD值为0.609±0.053的第六代细胞;5)将上步所得的第六代细胞分别用含有0μmol/L、50μmol/L、100μmol/L和150μmol/L的β‑巯基乙醇的细胞培养液培养24小时,然后测定细胞的MTT‑OD值和抗氧化指标;选择细胞活力和抗氧化力最强的100μmol/L的β‑巯基乙醇处理24h的细胞使用含有0.5%胎牛血清的DMEM饥饿处理,同时将第六代细胞做同样的饥饿处理,均作为供体细胞,备用;B、受体细胞的制备卵母细胞的制备:将牛离体卵巢迅速放入37℃的PBS中,用75%的酒精泡1min,再用含有双抗PBS冲洗3~4次,用带有12#针头的10ml一次性注射器从大小为2‑8mm卵泡中吸取卵丘卵母细胞复合物放入成熟培养微滴中进行成熟培养,每100μl成熟培养微滴中含20‑25个卵母细胞,培养皿放入38.5℃、5%CO<sub>2</sub>和相对饱和湿度条件的培养箱中培养22‑24h至成熟,备用;C、核移植1)核移植:将体外成熟培养的卵丘卵母细胞复合体即COCs转入含0.1%浓度的透明质酸酶的成熟培养液中消化5分钟,再用移液枪反复吹打,之后用成熟培养液即OMM洗2‑3次,尽量去掉卵丘细胞,随后放在体视显微镜下挑选包含第一极体的卵母细胞作为受体,之后将其放入含5μg/ml的细胞松弛素的新鲜配制的OMM的操作液微滴中,其上覆盖矿物油平衡10‑15min,在显微操作仪下,用去核针去除第一极体及附近的胞质,放在5μg/ml Hoechst 33342染色液中检测去核效果,将去核完全的受体卵母细胞的卵周隙内用注核针吸入边缘光滑、胞质均匀的供体细胞,得到重组胚;将所得重组胚转移至成熟培养液中修复2‑3h;2)将修复后的重组胚在含5μmol/L离子霉素的成熟培养液中培养5min,再用培养液洗2‑3遍,然后将其放入含2mmol/L 6‑二甲氨基吡啶的胚胎培养液中孵育4h,再冲洗2‑3次之后,第二组和第三组转移到含β‑巯基乙醇100μmol/L的胚胎培养液微滴中,第一组转移到不含β‑巯基乙醇的胚胎培养液微滴中,置38.5℃、5%CO<sub>2</sub>和相对饱和湿度条件的培养箱中,每48h换一次液,72h后加入10%胎牛血清继续培养,观察并记录胚胎发育情况;其中:细胞培养液‑1配制:胎牛血清10ml,1ml青霉素‑链霉素抗菌液,即双抗,用杜贝柯氏最小必需培养液即DMEM定容至100ml;细胞培养液‑2配制:胎牛血清20ml,1ml青霉素‑链霉素抗菌液,用杜贝柯氏最小必需培养液定容至100ml;磷酸盐缓冲液PBS配制:NaCl 8.00g/L、KCl 0.20g/L、KH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub>0.20g/L、NA<sub>2</sub>HPO<sub>4</sub>1.15g/L,用超纯水溶解,灭菌后常温保存;OMM成熟培养液配制:TCM19926ml、胎牛血清3.0ml、促卵泡激素15μg、促黄体素150ng、雌二醇30μg、表皮生长因子150ng、丙酮酸钠6.6mg、青霉素‑链霉素抗菌液0.3ml;过滤灭菌,4℃下保存;胚胎培养液配制:肌醇0.015g、必需氨基酸900μl、非必需氨基酸300μl、牛血清白蛋白0.09g、青霉素‑链霉素抗菌液300μl、丙酮酸盐600μl、Stock G 30μl、Stock C 28ml;过滤灭菌,4℃下保存;各种盐溶液的配制:Stock A:NaCl1.267g;KC l0.107g;KH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub>0.032g;MgSO<sub>4</sub>·7H<sub>2</sub>O 0.036g;青霉素‑链霉素抗菌液0.2ml;Na‑Lactate 0.12ml;H<sub>2</sub>O 19.5ml;Stock B:NaHCO<sub>3</sub>0.21g<sub>;</sub>H<sub>2</sub>O 10ml;Stock D:CaCl<sub>2</sub>·2H<sub>2</sub>O0.262g;H<sub>2</sub>O10ml;Stock G:L‑Glucose 0.292g;H<sub>2</sub>O 10ml;Stock C:STOCK A1.1ml;STOCK B 1.0ml;STOCK D 0.1ml;H<sub>2</sub>O 7.9ml。
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